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易科泰昆蟲高通量呼吸代謝測量系統(tǒng)
參考價(jià): 面議
具體成交價(jià)以合同協(xié)議為準(zhǔn)
  • 產(chǎn)品型號
  • 易科泰 品牌
  • 生產(chǎn)商 廠商性質(zhì)
  • 北京市 所在地

訪問次數(shù):291更新時(shí)間:2024-08-01 17:06:02

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產(chǎn)品簡介
高通量呼吸測量系統(tǒng)基于熒光光纖氧氣測量技術(shù),能夠?qū)壍任⑿⌒屠ハx、蟲卵、蛹、線蟲、土壤動物等微小型無脊椎動物進(jìn)行測量,測定其耗氧量,進(jìn)而評估其代謝水平。系統(tǒng)在昆蟲生理生態(tài)學(xué)、比較生物學(xué)、實(shí)驗(yàn)生物學(xué)、污染生態(tài)學(xué)與環(huán)境毒理學(xué)、環(huán)境科學(xué)、氣候變化研究等領(lǐng)域具有越來越重要的應(yīng)用價(jià)值。
產(chǎn)品介紹

       熒光光纖氧氣測量技術(shù)具有高精確度、高可靠性、響應(yīng)時(shí)間短、適用于氣相和液相等優(yōu)勢,因此隨著技術(shù)的問世,精確、高通量測量微小生物的呼吸和評估其能量代謝成為可能。高通量呼吸測量系統(tǒng)基于熒光光纖氧氣測量技術(shù),能夠?qū)壍任⑿⌒屠ハx、蟲卵、蛹、線蟲、土壤動物等微小型無脊椎動物進(jìn)行測量,測定其耗氧量,進(jìn)而評估其代謝水平。系統(tǒng)在昆蟲生理生態(tài)學(xué)、比較生物學(xué)、實(shí)驗(yàn)生物學(xué)、污染生態(tài)學(xué)與環(huán)境毒理學(xué)、環(huán)境科學(xué)、氣候變化研究等領(lǐng)域具有越來越重要的應(yīng)用價(jià)值。

 

易科泰昆蟲高通量呼吸代謝測量系統(tǒng)

果蠅卵、幼蟲、蛹、成蟲的耗氧率測定


 易科泰昆蟲高通量呼吸代謝測量系統(tǒng)易科泰昆蟲高通量呼吸代謝測量系統(tǒng)

左圖:果蠅卵、幼蟲、蛹耗氧率的比較;右圖:果蠅成蟲耗氧率(麻醉處理VS對照)

 

       系統(tǒng)由內(nèi)置熒光光纖氧氣傳感器的微型呼吸室、氧氣測量主機(jī)及數(shù)據(jù)采集分析軟件組成,可對96個通道的樣品進(jìn)行同步測量。

 

功能特點(diǎn)

· 氧氣測量高精度、高可靠性、低功耗、低交叉敏感性、快速響應(yīng)時(shí)間

· 輕松校準(zhǔn)

· 非侵入性和非破壞性測量

· 緊湊設(shè)計(jì),適用于溫控培養(yǎng)箱和/或搖床

· 氣體氧和溶解氧均可測量

 

技術(shù)參數(shù)

1. 檢測技術(shù):光纖氧傳感器技術(shù)。

2. 適用場景:原位檢測,可在培養(yǎng)箱里或搖床上使用,便于溫度控制。

3. 呼吸室:透明聚苯乙烯材質(zhì),支持預(yù)消毒處理,可重復(fù)使用。

4. 氧氣測量主機(jī):單個重670 g,162 x 102 x 32 mm

5. 主機(jī)內(nèi)置溫度傳感器:0-50°C,分辨率0.012°C,精度±0.5°C

6. 主機(jī)內(nèi)置壓強(qiáng)傳感器:300-1100mbar,分辨率0.11mbar,精度±6mbar

7. 蕞大采樣頻率:單通道激活時(shí)可達(dá)10-20次每秒

8. 氧氣測量精度:±0.1% O2@1% O2或±0.05 mg/L@0.44 mg/L

9. 氧氣測量分辨率:0.01% O2@1% O2或0.005 mg/L@0.44 mg/L

10. 電源:5VDC,USB供電

11. 響應(yīng)時(shí)間<30s

12. 通道數(shù):96

 

易科泰昆蟲高通量呼吸代謝測量系統(tǒng)易科泰昆蟲高通量呼吸代謝測量系統(tǒng)

左圖:封閉呼吸室中的苜蓿切葉蜂子脾和蛹;右圖:高通量呼吸系統(tǒng)和傳統(tǒng)呼吸測量法的結(jié)果比較

 


易科泰昆蟲高通量呼吸代謝測量系統(tǒng)

苜蓿切葉蜂耗氧率(V?O2)隨溫度的變化曲線

 

參考文獻(xiàn)

1. Clavé, C., Sugio, A., Morlière, S., Pincebourde, S., Simon, J.-C., Foray, V., 2022. Physiological costs of facultative endosymbionts in aphids assessed from energy metabolism. Functional Ecology 36, 2580–2592.

2. Earls, K.N., Campbell, J.B., Rinehart, J.P., Greenlee, K.J., 2023. Effects of temperature on metabolic rate during metamorphosis in the alfalfa leafcutting bee. Biology Open 12, bio060213.

3. Owen, C.A., Coetzee, J.A., Van Noort, S., Austin, A.D., 2017. Assessing the morphological and physiological adaptations of the parasitoid wasp E chthrodesis lamorali for survival in an intertidal environment. Physiol. Entomol 42, 173–180.

4. Uno, H., Stillman, J.H., 2020. Lifetime eurythermy by seasonally matched thermal performance of developmental stages in an annual aquatic insect. Oecologia 192, 647–656.

5. Glass, B.H., Jones, K.G., Ye, A.C., Dworetzky, A.G., Barott, K.L., 2023. Acute heat priming promotes short-term climate resilience of early life stages in a model sea anemone. PeerJ 11, e16574.

6. G?pel, T., Burggren, W.W., 2024. Temperature and hypoxia trigger developmental phenotypic plasticity of cardiorespiratory physiology and growth in the parthenogenetic marbled crayfish, Procambarus virginalis Lyko, 2017. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology 288, 111562.

7. K?mmer, N., Reimann, T., Ovcharova, V., Braunbeck, T., 2023. A novel automated method for the simultaneous detection of breathing frequency and amplitude in zebrafish (Danio rerio) embryos and larvae. Aquatic Toxicology 258, 106493.

8. Karlsson, K., S?reide, J.E., 2023. Linking the metabolic rate of individuals to species ecology and life history in key Arctic copepods. Mar Biol 170, 156.

9. Mathiron, A.G.E., Gallego, G., Silvestre, F., 2023. Early-life exposure to permethrin affects phenotypic traits in both larval and adult mangrove rivulus Kryptolebias marmoratus. Aquatic Toxicology 259, 106543.

10. Pettersen, A.K., Metcalfe, N.B., Seebacher, F., 2024. Intergenerational plasticity aligns with temperature-dependent selection on offspring metabolic rates. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences 379, 20220496. 

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