軍團菌檢測試紙 軍團菌檢測試紙

廣州健侖生物科技?有限公司 

本司長期供應軍團菌試劑盒 其主要品牌包括美國NovaBios、廣州健侖、廣州創侖等進口產品，國產產品，試劑盒的實驗方法是膠體金方法。

我司還提供其它進口或國產試劑盒：登革熱、瘧疾、流感、A鏈球菌、合胞病毒、腮病毒、乙腦、寨卡、黃熱病、基孔肯雅熱、克錐蟲病、違禁品濫用、肺炎球菌、軍團菌等試劑盒以及日本生研細菌分型診斷血清、德國SiFin診斷血清、丹麥SSI診斷血清等產品。

歡迎咨詢

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介紹

以急性發熱性呼吸道癥狀為特征的退伍軍人癥是由吸入含有嗜肺軍團菌的霧化水引起的。嗜肺軍團菌血清組1zui常從患者中分離（1,2）。
IMMUNOCATCHTM軍團菌（Legionella）是一種側流免疫層析法，可通過快速可靠地檢測尿樣中的抗原，對嗜肺軍團菌血清型1感染進行早期診斷。

原理

本產品是一種試劑盒，設計用于免疫層析法檢測尿樣中嗜肺軍團菌血清型1 LPS抗原。
當樣品通過毛細作用遷移通過結合墊時，樣品中的軍團菌抗原與綴合至膠體顆粒的抗軍團菌抗體結合形成抗原 - 抗體復合物。抗原 - 抗體復合物在試紙條上遷移，與固定在膜上的抗軍團菌抗體特異性結合而產生紅線。然后通過肉眼觀察紅線的存在來確定軍團菌抗原的存在。
此外，抗-Legionella抗體偶聯的膠體金在反應中不被消耗，與固定在對照線上的抗免疫球蛋白抗體結合產生紅線，表明在測試條上的反應是成功的。

【包裝規格】20T/盒

【檢測方法】

1）從鋁袋中取出所需數量的磁帶，并將它們放在水平面上。

2）使用定量移液器慢慢地吸取90μL或更多的樣品。 通過一次移液操作，將全部樣品滴入盒子的樣品位置。 滴下后，剩余的標本留在吸管內。

3）在室溫（15-30°C）下將盒子放置15分鐘，

4）檢查盒子評估地點是否有線（標有“C”和“T”）。

結果

應該在反應開始15分鐘后及時進行評估。 檢查評估地點，并通過下面描述的紅線來評估結果。
1）正面：紅色控制線和測試線均在評估現場。 當兩條線在反應時間結束之前出現時結果是肯定的。
2）否定的：評估地點只有一條紅色的控制線。
3）無效：無論控制線是否存在，無論是否存在測試線，測試均無效。

微生物多樣化多到可怕，而且復雜。任何特殊處理都會改變其組成部分。即使是微生物菌群zui小的變化或者相對豐度改變，也會極大的干擾群體比對，因此微生物組學實驗中樣品收集和儲存方法引起的變化越小越好。1、樣品均質化
原始樣品的保真性從收集樣品的那一刻就開始了。*步需要確保的是獲得的是一個均勻的樣品，2015年，一組研究人員完成了一項人腸道微生物組的研究，他們將液氮糞便樣品通過研缽及研杵搗碎，使之成為粉末狀小樣品，然后轉移到試管中，?80°C儲存。比較于之前的方法，這種制備樣品的方法能減少微生物組成上出現的可變性。土壤樣品具有更加復雜的組分，因此科學家們建議將土壤樣品放到攪拌機中，充分攪碎顆粒物。他們也建議在初次收集樣品后再進行多次等分分裝，因為多次反復凍融會破壞核酸，這一點其實很多實驗室研究人員都知道。比如研究人員可以采用無菌一次性活檢鉗（biopsy punch）從一個更大的原始樣品中收集幾乎相同大小的凍存糞便顆粒，然后直接將這些顆粒放入含有核酸裂解液中的提取管中。這種方法就是對原始樣品進行等分，可以為科學家們節約一次凍融重復循環。
2014年，美國福賽思研究所、麻省綜合醫院（MGH）和哈佛大學公共衛生學院等處的科學家，開發出一種新的方法，收集用于基因組和轉錄組分析的唾液與糞便。該方法不需要專業人員和設施，同時還能保持樣品的完整性。研究人員設計了固定劑的選擇和取樣流程，可讓8名受試者在家里收集微生物樣品，然后將其運至實驗室進行多種類型的分子分析。盡管采用不同的取樣方法，微生物種類、基因和基因轉錄組成，在所有樣品中都是*的。隨后對這些樣品進行的分析表明，測量的人類微生物組的功能潛力和功能活性之間存在著有趣的異同點。在這項研究中是目前為止，結合表型分類學、宏基因組學和宏轉錄組數據譜，進行的*個人類微生物組研究。結果詳細描述了腸道菌群基因組潛能和基因表達之間的關系，驗證了在受試者收集和運輸的樣品中開展宏轉錄組研究的可行性。

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【公司名稱】 廣州健侖生物科技有限公司
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【企業文化宣傳】

Microbial diversity is more scary and complex. Any special treatment changes its components. Even minimal changes in microbial flora or changes in relative abundance can greatly interfere with population comparisons, so changes in sample collection and storage in a microbiota experiment should be as small as possible. 1, the sample is homogenized
The fidelity of the original sample begins when the sample is collected. The first step to be sure is to obtain a homogeneous sample. In 2015, a team of researchers completed a study of the human gut microbiota that mashed liquid nitrogen stool samples in a mortar and pestle A small, powdered sample is then transferred to a test tube and stored at 80 ° C. Compared to previous methods, this method of preparing samples can reduce the variability in microbial composition. Soil samples have more complex components, so scientists recommend putting the soil sample in a blender and thoroughly crushing the particles. They also recommend adding multiple aliquots after the initial sample collection because many repeated freeze-thaw cycles disrupt nucleic acids, as many laboratory researchers know. For example, researchers can use sterile disposable biopsy pincers to collect almost the same size of cryopreservation fecal pellets from a larger original sample and place the pellets directly in an extraction tube containing the nucleic acid lysate. This method is to aliquot the original sample, which can save scientists a repeat freeze-thaw cycle.
In 2014, scientists at Forsythia Research Institute, Massachusetts General Hospital (MGH) and Harvard School of Public Health developed a new method to collect saliva and faeces for genomic and transcriptome analyzes. This method does not require specialists and facilities, while maintaining sample integrity. The researchers designed a fixative selection and sampling procedure that allowed eight subjects to collect microbial samples at home and then shipped to the lab for multiple types of molecular analysis. Despite the different sampling methods, microbial species, gene and gene transcription profiles are consistent across all samples. Subsequent analysis of these samples showed interesting similarities and differences between the functional potential and the functional activity of the measured human microbiome. In this study, so far, the first human microbiome study conducted in combination with phenomenological taxonomy, metagenomics and macro transcriptome data profiles. The results provide a detailed description of the relationship between gut microbiota genomic potential and gene expression, demonstrating the feasibility of conducting macro-transcriptome studies in samples collected and transported by subjects.